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中华肝脏外科手术学电子杂志 ›› 2014, Vol. 03 ›› Issue (01) : 52 -56. doi: 10.3877/cma.j.issn.2095-3232.2014.01.013

所属专题: 文献

基础研究

大鼠肝固有动脉阻断肝缺血-再灌注损伤模型最佳灌注时间的研究
林颖1, 刘慧玲1, 王冰2, 曾利娴1, 何卉欣1, 文卓夫1, 汪根树3, 吴斌1,()   
  1. 1. 510630 广州,中山大学附属第三医院消化内科
    2. 河南省郑州人民医院肝脏外科
    3. 510630 广州,中山大学附属第三医院肝移植中心
  • 收稿日期:2013-12-06 出版日期:2014-02-10
  • 通信作者: 吴斌
  • 基金资助:
    国家重点基础研究发展计划(973)项目(2012CB526700); 国家自然科学基金(30971357, 81170422, 81370511); 广东省自然科学基金(S2011020002348)

Research on the optimum reperfusion duration of liver ischemia-reperfusion injury model by occluding proper hepatic artery in rats

Ying﹡ Lin1, Huiling Liu1, Bing Wang2, Lixian Zeng1, Huixin He1, Zhuofu Wen1, Genshu Wang3, Bin Wu1,()   

  1. 1. Department of Gastroenterology, the Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510630, China
  • Received:2013-12-06 Published:2014-02-10
  • Corresponding author: Bin Wu
  • About author:
    Corresponding author: Wu Bin, Email:
引用本文:

林颖, 刘慧玲, 王冰, 曾利娴, 何卉欣, 文卓夫, 汪根树, 吴斌. 大鼠肝固有动脉阻断肝缺血-再灌注损伤模型最佳灌注时间的研究[J/OL]. 中华肝脏外科手术学电子杂志, 2014, 03(01): 52-56.

Ying﹡ Lin, Huiling Liu, Bing Wang, Lixian Zeng, Huixin He, Zhuofu Wen, Genshu Wang, Bin Wu. Research on the optimum reperfusion duration of liver ischemia-reperfusion injury model by occluding proper hepatic artery in rats[J/OL]. Chinese Journal of Hepatic Surgery(Electronic Edition), 2014, 03(01): 52-56.

目的

探讨阻断大鼠肝固有动脉建立肝缺血-再灌注损伤(IRI)模型的最佳灌注时间。

方法

SD大鼠48只,平均体重(200±25)g,按随机数字表法随机分为IRI 0、1、3、6、12、24、48 h组和假手术(SO)组,每组各6只。IRI各组选择性阻断肝固有动脉1 h后血流恢复,分别在血流恢复0、1、3、6、12、24、48 h留取血和肝组织标本。SO组仅分离肝固有动脉,暴露第一肝门1 h后取相应标本。观察各组大鼠血清ALT、AST水平,肝组织病理学改变,肝组织DNA片段化率,肝组织Ki-67表达水平。多组计量资料的比较采用单因素方差分析和LSD-t检验。

结果

IRI 0、1、3、6、12、24、48 h组和SO组大鼠血清ALT水平分别为(53±25)、(85±20)、(96±18)、(411±96)、(87±19)、(81±15)、(46±6)、(60±14)U/L。大鼠血清AST水平相应为(238±63)、(364±111)、(375±68)、(1 291±511)、(800±87)、(854±218)、(484±219)、(248±94)U/L。IRI 6 h组血清ALT、AST水平最高(F=36.015, 18.241;P<0.05)。IRI 6 h组肝组织损伤程度最重。大鼠肝组织DNA片段化率相应为(7.5±1.5)%、(9.2±2.2)%、(9.3±2.3)%、(12.6±2.4)%、(6.3±1.0)%、(5.4±0.9)%、(4.5±0.8)%、(4.5±1.1)%,6 h组肝组织DNA片段化率最高(F=15.992, P<0.05)。大鼠肝组织Ki-67表达相应为(3.5±1.4)、(5.6±1.8)、(8.7±2.3)、(13.7±2.4)、(15.2±1.2)、(20.5±2.2)、(31.8±2.5)、(2.4±1.2)个/高倍视野,IRI 48 h组肝组织Ki-67表达水平最高(F=261.707,P<0.05)。

结论

阻断大鼠肝固有动脉可以成功建立肝IRI模型,IRI最佳灌注时间为6 h。

Objective

To investigate the optimum reperfusion duration of liver ischemia- reperfusion injury (IRI) model by occluding the proper hepatic artery in rats.

Methods

Fourty-eight Sprague Dawley (SD) rats with mean weight of (200±25) g were randomly assigned to 8 groups by random number table method: IRI- 0, 1, 3, 6, 12, 24, 48 h and sham operation (SO) group with 6 rats in each group. The proper hepatic arteries in rats of IRI groups were selectively occluded for 1 h and then blood flow recovered. Samples of blood and liver tissues were collected at the time points of 0, 1, 3, 6, 12, 24, 48 h of reperfusion. In SO group, samples were collected after the proper hepatic artery was isolated and the first portal was exposed for 1 h. The levels of serum alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST), pathological changes, DNA fragmentation rates, and levels of Ki-67 expression of liver tissues were observed in each group. Measurement data of multiple groups were compared using one-way analysis of variance and LSD-t test.

Results

The levels of serum ALT in IRI- 0, 1, 3, 6, 12, 24, 48 h and SO group were (53±25), (85±20), (96±18), (411±96), (87±19), (81±15), (46±6), (60±14) U/L respectively. The levels of serum AST were (238±63), (364±111), (375±68), (1 291±511), (800±87), (854±218), (484±219), (248±94) U/L accordingly. The levels of serum ALT, AST in IRI 6 h group were the highest (F=36.015, 18.241; P<0.05). The damage of liver tissues in IRI 6 h group was the most serious. The DNA fragmentation rates of liver tissues were (7.5±1.5)%, (9.2±2.2)%, (9.3±2.3)%, (12.6±2.4)%, (6.3±1.0)%, (5.4±0.9)%, (4.5±0.8)%, (4.5±1.1)% accordingly, which was the highest in IRI 6 h group (F=15.992, P<0.05). The levels of Ki-67 expression of liver tissues were (3.5±1.4), (5.6±1.8), (8.7±2.3), (13.7±2.4), (15.2±1.2), (20.5±2.2), (31.8±2.5), (2.4±1.2) / high power field accordingly, which was the highest in IRI 48 h group (F=261.707, P<0.05).

Conclusions

The liver IRI model can be successfully established by occluding the proper hepatic artery, and the optimum reperfusion duration of IRI is 6 h.

图1 IRI组大鼠和SO组大鼠肝组织病理学改变(HE ×400)
图2 IRI组大鼠和SO组大鼠肝组织Ki-67表达(免疫组化法×400)
[1]
Kashfi A,Mehrabi A,Pahlavan PS, et al. A review of various techniques of orthotopic liver transplantation in the rat[J]. Transplant Proc, 2005, 37(1): 185-188.
[2]
麻勇,姜洪池.肝脏缺血再灌注损伤的实验研究现状与展望[J].中华实验外科杂志,2012, 29(10): 1880-1882.
[3]
Briceño J,Ciria R. Early graft dysfunction after liver transplantation[J]. Transplant Proc, 2010, 42(2): 631-633.
[4]
Abu-Amara M,Yang SY,Tapuria N, et al. Liver ischemia/reperfusion injury: processes in inflammatory networks: a review[J]. Liver Transpl, 2010, 16(9): 1016-1032.
[5]
李佩东,关连越,李巍.乌司他丁对肝缺血-再灌注损伤保护作用的研究进展[J].器官移植,2013, 4(2): 117-122.
[6]
宋建生,夏先明.肝脏缺血再灌注损伤机制的研究进展[J].泸州医学院学报,2013, 36(4): 409-412.
[7]
麻勇,汪大伟,刘连新,等.小鼠肝脏部分缺血再灌注损伤模型的建立[J].中华消化外科杂志,2013, 12(9): 703-707.
[8]
高建虎,卢绮萍.丹参预处理对肝脏缺血再灌注损伤后磷酸化真核生物翻译起始因子2α和caspase12的影响[J].中华消化外科杂志,2013, 12(6): 460-464.
[9]
孙萍萍,陈杰,袁芳,等.大鼠肝缺血再灌注模型建立与评价[J].热带医学杂志,2013, 13(4): 390-392,封3.
[10]
元文勇,余伟平,叶启发,等.大鼠肝脏缺血再灌注损伤程度判定指标的选择[J].中国普通外科杂志,2008, 17(7): 650-653.
[11]
Shuh M,Bohorquez H,Loss GE Jr, et al. Tumor necrosis factor-α: life and death of hepatocytes during liver ischemia/reperfusion injury[J]. Ochsner J, 2013, 13(1): 119-130.
[12]
Montalvo-Jave EE,Escalante-Tattersfield T,Ortega-Salgado JA, et al. Factors in the pathophysiology of the liver ischemia-reperfusion injury[J]. J Surg Res, 2008, 147(1): 153-159.
[13]
Glanemann M,Münchow S,Schirmeier A, et al. Steroid administration before partial hepatectomy with temporary inflow occlusion does not influence cyclin D1 and Ki-67 related liver regeneration[J]. Langenbecks Arch Surg, 2004, 389(5): 380-386.
[14]
Schlossberg H,Zhang Y,Dudus L, et al. Expression of c-fos and c-jun during hepatocellular remodeling following ischemia/reperfusion in mouse liver[J]. Hepatology, 1996, 23(6): 1546-1555.
[15]
刘志刚,钱叶本,耿小平,等.大鼠合并缺血再灌注损伤肝大部切除后Ki-67、Cyclin D1及TNF-α的表达[J].肝胆外科杂志,2007, 15(2): 151-153.
[16]
Lentsch AB. Regulatory mechanisms of injury and repair after hepatic ischemia/reperfusion[J]. Scientifica, 2012: 513192.
[1] 钟雅雯, 王煜, 王海臻, 黄莉萍. 肌苷通过抑制线粒体通透性转换孔开放缓解缺氧/复氧诱导的人绒毛膜滋养层细胞凋亡[J/OL]. 中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2024, 20(05): 525-533.
[2] 汤宏涛, 何坤. 中晚期肝细胞癌介入治疗的进展及前景[J/OL]. 中华普通外科学文献(电子版), 2024, 18(04): 305-308.
[3] 常小伟, 蔡瑜, 赵志勇, 张伟. 高强度聚焦超声消融术联合肝动脉化疗栓塞术治疗原发性肝细胞癌的效果及安全性分析[J/OL]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2025, 19(01): 56-59.
[4] 黄福, 王黔, 金相任, 唐云川. VEGFR2、miR-27a-5p在胃癌组织中的表达与临床病理参数及预后的关系研究[J/OL]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2024, 18(05): 558-561.
[5] 唐亦骁, 陈峻, 连正星, 胡海涛, 鲁迪, 徐骁, 卫强. 白果内酯对小鼠肝缺血再灌注损伤保护作用研究[J/OL]. 中华移植杂志(电子版), 2024, 18(05): 278-282.
[6] 王雪玲, 曹欢, 顾劲扬. 肠道菌群在器官缺血再灌注损伤中的作用及机制研究进展[J/OL]. 中华移植杂志(电子版), 2024, 18(04): 247-250.
[7] 祝炜安, 林华慧, 吴建杰, 黄炯煅, 吴婷婷, 赖文杰. RDM1通过CDK4促进前列腺癌细胞进展的研究[J/OL]. 中华腔镜泌尿外科杂志(电子版), 2024, 18(06): 618-625.
[8] 郑俊, 吴杰英, 谭海波, 郑安全, 李腾成. EGFR-MEK-TZ三联合分子的构建及其对去势抵抗性前列腺癌细胞增殖与凋亡的影响[J/OL]. 中华腔镜泌尿外科杂志(电子版), 2024, 18(05): 503-508.
[9] 孙璐, 蒋亚玲, 陈凌君. 布托啡诺对脑缺血再灌注损伤大鼠神经炎症和JAK2/STAT3信号通路的影响[J/OL]. 中华细胞与干细胞杂志(电子版), 2024, 14(06): 344-350.
[10] 黄程鑫, 陈莉, 刘伊楚, 王水良, 赖晓凤. OPA1 在乳腺癌组织的表达特征及在ER阳性乳腺癌细胞中的生物学功能研究[J/OL]. 中华细胞与干细胞杂志(电子版), 2024, 14(05): 275-284.
[11] 季加翠, 孙春斌, 罗恩丽. 姜黄素通过调节NF-κB/NLRP3通路减轻LPS诱导小胶质细胞神经炎症损伤[J/OL]. 中华细胞与干细胞杂志(电子版), 2024, 14(04): 193-203.
[12] 曾聿理, 雷发容, 肖慧, 邱德亮, 谢静, 吴寻. 氯普鲁卡因通过调控circRNA-ZKSCAN1表达抑制肝癌Huh-7细胞体外生长和转移的研究[J/OL]. 中华细胞与干细胞杂志(电子版), 2024, 14(04): 220-228.
[13] 杜霞, 马梦青, 曹长春. 造影剂诱导的急性肾损伤的发病机制及干预靶点研究进展[J/OL]. 中华肾病研究电子杂志, 2024, 13(05): 279-282.
[14] 李京, 牛博, 刘晓蓓, 魏新雪, 黄荣. circ-SESN2 沉默靶向调控miRNA-23a-5p/ULK1 在神经细胞氧化应激损伤中的作用机制研究[J/OL]. 中华神经创伤外科电子杂志, 2024, 10(05): 263-272.
[15] 蔡晓雯, 李慧景, 丘婕, 杨翼帆, 吴素贤, 林玉彤, 何秋娜. 肝癌患者肝动脉化疗栓塞术后疼痛风险预测模型的构建及验证[J/OL]. 中华临床医师杂志(电子版), 2024, 18(08): 722-728.
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